La tordeuse de la vigne est l’un des ravageurs les plus étudiés et redoutés de la viticulture italienne. Lobesia botrana peut compromettre la production sur plusieurs générations tout au long de la saison , avec des dégâts qui vont bien au-delà de la simple perte de poids : les baies déchirées deviennent un terrain propice au développement de la pourriture grise et du pourrissement acide, ce qui a des conséquences sur la qualité du vin et des raisins de table.
Cet article offre un aperçu complet : identification, cycle biologique détaillé, seuils d’intervention, produits autorisés dans la lutte intégrée et biologique contre les ravageurs, et limites structurelles des techniques de surveillance visuelle.
Identification : Comment reconnaître Lobesia botrana
Quiconque travaille dans les vignes sait que la tordeuse de la vigne est difficile à repérer avant qu’elle ne cause des dégâts . L’adulte, qui vole au crépuscule, est petit et parfaitement camouflé sur l’écorce : ses ailes antérieures présentent un motif marbré grisâtre , ocre et brun qui le rend presque invisible sur les sarments. La période d’observation directe est courte. Lors de l’échantillonnage, l’attention se porte principalement sur les œufs et les larves . Les œufs sont aplatis, presque translucides, et pondus individuellement sur les boutons floraux ou le rachis. Le stade « tête noire » , lorsque la capsule céphalique de la larve en développement devient visible à travers le chorion , est le moment le plus propice au comptage : l’œil s’y habitue rapidement, mais cela exige de l’attention et un bon éclairage.
La larve nouveau-née , quant à elle, est pratiquement incolore avec une tête foncée et pénètre rapidement dans le raisin avant même d’être facilement repérable. Aux stades ultérieurs, elle devient verdâtre ou jaunâtre , avec une tête et une plaque thoracique brunes.
À ne pas confondre avec la tordeuse de la vigne ( Eupoecilia ambiguella ) : l’adulte possède des ailes jaunes avec une bande médiane transversale foncée, très différente du plumage marbré de la tordeuse de la vigne. Elle ne produit que deux générations par an, rarement trois , et est plus fréquente dans les régions septentrionales et en altitude . En pratique, là où les deux espèces coexistent, les traitements sont similaires car leurs cycles biologiques se chevauchent.
Répartition géographique et plantes hôtes
Lobesia botrana est largement répandue dans le bassin méditerranéen , dans les Balkans , dans certaines régions d’ Afrique du Nord , au Moyen-Orient et au Japon . En Italie, elle est présente sur l’ensemble du territoire national , avec une plus grande importance économique dans les régions du centre et du sud.
Bien qu’il soit essentiellement polyphage , capable de se développer aux dépens de plus de 27 familles de plantes , la vigne est sa principale plante hôte. Parmi les plantes qui poussent spontanément figure le daphné (Daphne gnidium) , considéré comme la plante hôte originelle de l’espèce. Il peut également s’attaquer aux oliviers , aux groseilliers et à diverses plantes du milieu méditerranéen, notamment le romarin , la clématite , le chèvrefeuille et la viorne .
En Émilie-Romagne, les dégâts économiquement significatifs se concentrent dans la plaine de Ravenne et la région de Lambrusco, entre Modène et Reggio Emilia. Les infestations sont fortement influencées par le microenvironnement et les conditions climatiques saisonnières, avec des fluctuations considérables non seulement d’une année à l’autre, mais aussi d’une génération à l’autre.
Cycle de vie : les trois générations de Lobesia botrana
Dans les principales régions viticoles italiennes, L. botrana produit généralement trois générations par an . Au nord, lors des années fraîches, ce nombre peut être réduit à deux. Au sud , où les températures estivales favorisent un développement accéléré, une quatrième génération partielle a été observée.
Hivernage
L’insecte passe l’hiver en diapause , à l’ état de chrysalide, caché dans un cocon de soie sous le rhytidome de la souche, entre les fissures des poteaux de soutien ou dans le sol. Les principaux facteurs de mortalité naturelle durant l’hivernage sont :
- Des températures inférieures à -7°C pendant plusieurs jours sont mortelles pour une part importante des chrysalides.
- Une humidité relative élevée favorise les attaques de champignons entomophages.
- Le parasitoïde hyménoptère Didrachys affinis attaque régulièrement les chrysalides hivernantes.
Premier vol (génération anthophage) - avril/mai
La première émergence a lieu lorsque la température de l’air dépasse 10 °C pendant 10 à 12 jours consécutifs . Les adultes sont actifs à des températures supérieures à 12 °C, avec des conditions optimales entre 20 et 30 °C et une humidité relative de 40 à 70 %. La durée de vie moyenne d’un adulte en milieu naturel est de 8 à 10 jours.
Les femelles fécondées pondent leurs œufs sur les boutons floraux, et les larves se nourrissent des fleurs et des inflorescences, formant ainsi les inflorescences soyeuses caractéristiques. Chaque larve détruit en moyenne 6 à 8 boutons floraux. Le développement des chrysalides a lieu à l’intérieur même des inflorescences.
À ce stade , les pertes économiques sont généralement limitées : la grappe compense par une nouaison accrue. C’est pourquoi les réglementations de production intégrée interdisent les traitements de la première génération.
Deuxième vol (génération carpophage) - juin/juillet
La seconde génération de larves a lieu de fin juin à mi-juillet . Elles s’attaquent aux grappes de raisin gonflées, y perforant des trous et les vidant partiellement. Chaque larve endommage en moyenne 5 à 7 grains de raisin.
C’est sur cette génération qu’il est impératif de concentrer les efforts de défense . Les dommages mécaniques créent des points d’entrée pour Botrytis cinerea et les agents de pourriture acide, déclenchant un effet domino qui peut compromettre des parcelles entières.
Troisième génération (génération mangeuse de carpes) - août/septembre
Le troisième vol a lieu entre août et mi-septembre , les larves se développant sur les raisins en maturation. Durant cette phase, chaque larve endommage 10 à 20 grains de raisin, et l’augmentation de la teneur en sucre favorise un développement larvaire plus rapide et une fécondité femelle nettement supérieure.
| Génération | Période (Italie du Nord) | Cible larvaire | Pertinence économique | |
| Premier (anthophage) | Avril - Mai | boutons de fleurs et fleurs | Généralement faible | |
| Deuxième (carpophage) | Juin - juillet | Raisins gonflés | Génération de clés élevées | |
| Troisième (carpophage) | Août - septembre | Raisins mûrs | Très élevé - plus nocif | |
Développement embryonnaire et larvaire : influence de la température
La vitesse de développement des œufs et des larves dépend étroitement de la température , un paramètre fondamental pour le calibrage des modèles de prévision.
Durée moyenne de développement des œufs (en jours) en fonction de la température :
| 13 °C | 18°C | 23 °C | 26 °C | 28°C | 31°C | 34 °C |
| 18,3 | 9,1 | 5,3 | 4,1 | 4,0 | 3,9 | 4,6 |
Durée moyenne du développement larvaire complet (jours) en fonction de la température :
| 14 °C | 18°C | 23 °C | 25 °C | 28°C | 30°C | 33 °C |
| 61,1 | 32,2 | 23,8 | 17,3 | 16,2 | 15,0 | 15,9 |
Le lien entre les papillons et le Botrytis cinerea : une interaction qui amplifie les dégâts
L’un des aspects les moins abordés sur le terrain est la synergie biologique entre L. botrana et Botrytis cinerea . Des études expérimentales ont comparé le développement larvaire sur un régime alimentaire contenant du mycélium de botrytis à un régime alimentaire dépourvu de ce champignon (données : Service phytosanitaire d’Émilie-Romagne).
| Condition | Développement larvaire (jours) | Mortalité (%) | Œufs / femelle | Œufs viables |
| Régime alimentaire standard | 34.4 | 23% | 54 | ~91% |
| Régime alimentaire contenant du Botrytis | 25.0 | 13,5% | 106 | ~93% |
Le champignon non seulement ne gêne pas les larves, mais les nourrit mieux . Les larves qui se développent sur le mycélium de Botrytis se développent plus rapidement, présentent un taux de mortalité presque deux fois inférieur et un taux de fécondité deux fois supérieur . Par conséquent, un vignoble déjà atteint de botrytis constitue également un environnement plus favorable au développement du papillon, avec un effet amplificateur dont il faut tenir compte lors de la mise en place d’une stratégie de lutte.
Surveillance : pièges à phéromones, modèle de prévision et échantillonnage visuel
Une intervention opportune et calibrée nécessite un système de surveillance structuré sur trois niveaux .
1. Pièges à phéromones sexuelles
Les pièges à phéromones capturent les mâles adultes et fournissent des informations sur la dynamique de vol. Instructions d’utilisation principales :
- Installez 1 à 2 pièges par hectare début avril.
- Vérifiez tous les 3 à 4 jours pour détecter un début significatif de captures.
- Remplacez la capsule hormonale environ 10 jours avant la date prévue de départ des jeunes de la génération suivante.
- Les captures de première génération témoignent de la pression démographique , mais ne justifient pas un traitement.
Pour que le début des captures soit considéré comme statistiquement significatif , une augmentation progressive du nombre de mâles capturés doit être enregistrée lors de deux contrôles successifs espacés de 3 à 4 jours .
2. Modèle de prévision MRV-Lobesia
Le modèle de prévision MRV-Lobesia calcule le taux de vol cumulatif et estime le moment optimal d’intervention en fonction des données de température locales. Les bulletins phytosanitaires provinciaux intègrent les prévisions du modèle aux données de capture réelles des pièges locaux .
Périodes temporelles clés à partir du début des captures (deuxième génération) :
- Du début des captures importantes au début de la ponte : 5 à 8 jours.
- De la ponte à l’éclosion des larves : 4 à 6 jours.
- Fenêtre d’intervention optimale : entre le 5e et le 14e jour à compter du début des captures, en fonction du mécanisme d’action du produit choisi et du stade phénologique de la génération.
3. Échantillonnage visuel
L’observation visuelle des grappes complète l’utilisation des pièges. Elle doit être réalisée sur un échantillon représentatif par parcelle et permet de :
- Vérifiez la présence d’œufs (au stade de « point noir », ils sont facilement reconnaissables).
- Comptez les trous de pénétration et estimez le pourcentage de grappes infestées.
- Valider les prédictions du modèle avec des données réelles au niveau de la parcelle.
Seuil d’intervention dans les spécifications de production intégrée
| Génération | Type de vignoble | Seuil d’intervention |
| Avant | Tout le monde | Traitements non autorisés |
| Deuxième | Généralement infesté | Présence d’œufs ou de trous de pénétration |
| Deuxième | Généralement non infesté | 5 % des bouquets contiennent des œufs et/ou des larves ou présentent des trous. |
| Troisième | Tout le monde | 5 % des grappes infestées |
Stratégies de défense : produits et calendrier d’intervention
Le choix du principe actif doit se faire en fonction de son mécanisme d’action, du stade phénologique de sa génération et de son utilisation potentielle en agriculture biologique.
Produits à action ovicide ou ovolarvicide (à appliquer avant l’éclosion des œufs)
- Tébufénozide (MAC, mimétique de l’ecdysone) : recommandé uniquement pour les femelles de deuxième génération, il agit en provoquant une mue précoce et létale. Il doit être appliqué avant l’éclosion des œufs.
- Méthoxyfénozide (MAC) : même famille que le tébufénozide, utilisation similaire.
- Chlorantraniliprole (diamides) : propriétés ovolarvicides, maximum 1 application par an. Également actif contre la teigne rayée ( Cryptobabes gnidiella ) et Eulia.
- Émamectine (avermectine) : ovolarvicide, à appliquer sur les œufs à tête noire. Non autorisé en agriculture biologique.
- IGR : téflubenzuron, lufénuron, flufénoxuron : inhibiteurs de la synthèse de la chitine, à distribuer pendant la ponte des œufs.
Produits à action larvicide (à appliquer dès la naissance des larves, avant leur pénétration dans les raisins)
- Spinosad (spinosine) : autorisé en agriculture biologique, maximum 3 traitements/an en alternance avec le spinétoram.
- Bacillus thuringiensis kurstaki (Btk) : agent microbiologique autorisé en agriculture biologique, sans résidus sur les baies. Optimal pour la troisième génération. À renouveler tous les 7 à 10 jours en cas de fortes pluies.
- Indoxacarbe (oxadiazine) : larvicide à large spectre.
| Produit | Catégorie | Cible | Biologique | Nombre maximal d’interventions par an |
| Tébufénozide | MAC | œufs/larves nouveau-nés | Non | Voir les spécifications |
| Méthoxyfénozide | MAC | œufs/larves nouveau-nés | Non | Voir les spécifications |
| Chlorantraniliprole | Diamides | Œufs/larves | Non | 1 |
| Émamectine | Avermectines | Œufs/larves | Non | Voir les spécifications |
| Téflubenzuron / lufénuron | IGR | œufs/larves nouveau-nés | Non | Voir les spécifications |
| Spinosad | Spinosine | Larves | Oui | 3 (alt. spinetoram) |
| Bacillus thuringiensis | Biologique | Larves | Oui | Aucune limite |
| Indoxacarb | Oxadiazine | Larves | Non | Voir les spécifications |
Confusion sexuelle : la méthode la plus sélective
La technique de confusion sexuelle , qui consiste à saturer l’environnement de phéromones sexuelles de synthèse, empêche les mâles de localiser les femelles , réduisant ainsi drastiquement l’accouplement et donc la ponte d’œufs fertiles. Elle ne laisse aucun résidu sur les raisins et constitue la méthode la plus respectueuse des ennemis naturels.
Pour être efficace, il faut :
- Superficies minimales de 5 à 10 hectares par bloc (les surfaces plus petites réduisent l’efficacité en raison de ce que l’on appelle « l’effet de bordure »).
- Installation des haut-parleurs fin mars/début avril , avant le premier vol.
- Surveillance à l’aide de pièges témoins pour vérifier l’efficacité de la saturation en phéromones.
Dans les vignobles en production intégrée ou biologique, notamment dans les appellations prestigieuses, la confusion des cépages représente aujourd’hui une norme de référence , souvent encouragée par des mesures agro-environnementales régionales.
Ennemis naturels : un patrimoine à préserver
La communauté des antagonistes naturels de L. botrana est riche et comprend :
- Hyménoptères parasitoïdes : Ichneumonidés, Braconides, Chalcididés (parasitoïdes larvaires et nymphaux).
- Diptères Tachinidae (parasitoïdes larvaires).
- Champignons entomophages .
- Virus de la polyédrose cytoplasmique et microsporidies .
Le parasitoïde Didrachys affinis est connu pour lutter contre les pupes hivernantes. L’utilisation d’insecticides à large spectre sur la première génération élimine ces antagonistes précisément lorsqu’ils se trouvent sur les inflorescences, favorisant ainsi les pullulations de la cochenille farineuse ( Planococcus citri ) et réduisant la lutte biologique sur les générations suivantes. C’est là la raison technique la plus convaincante, outre son impact économique direct limité, justifiant l’interdiction de tout traitement sur la première génération.
FAQ - Foire aux questions sur la tordeuse de la vigne
1. Les pièges à phéromones sont-ils suffisants pour calibrer le traitement ?
Les pièges capturent les mâles adultes et fournissent des informations sur la dynamique de vol, mais ne permettent pas d’estimer directement la pression larvaire sur les colonies . Ils doivent être complétés par un échantillonnage visuel des œufs et, le cas échéant, par les prédictions du modèle MRV-Lobesia . Utilisés seuls, sans analyse du pourcentage de colonies infestées, ils peuvent conduire à des traitements inutiles ou inopportuns.
2. Pourquoi ne devrions-nous pas traiter avec la première génération ?
Pour deux raisons complémentaires. Premièrement, les dégâts causés aux boutons floraux dépassent rarement le seuil de nuisibilité économique, car la grappe compense par une fructification accrue. Deuxièmement, les hyménoptères parasitoïdes présents sur les inflorescences durant cette période constituent les principaux agents de lutte biologique naturelle . Le traitement les élimine , réduisant ainsi la capacité de confinement des générations suivantes et favorisant les pullulations de ravageurs secondaires tels que la cochenille farineuse.
3. Quels produits peuvent être utilisés de manière biologique contre la mite ?
Les substances actives autorisées en agriculture biologique sont Bacillus thuringiensis kurstaki ( Btk ) et le spinosad . Le Btk est privilégié pour la troisième génération car il ne laisse aucun résidu et présente une large marge de sécurité avant la récolte. Le spinosad est efficace sur les larves au début de leur développement, mais il convient de respecter le nombre maximal d’applications par an et de l’appliquer de préférence le soir afin de limiter les contacts avec les pollinisateurs.
La tordeuse de la vigne s’attaque plus durement aux plantes déjà fragilisées. Une vigne bien hydratée et nourrie réagit mieux et limite les dégâts indirects. Plantvoice surveille en continu l’état physiologique de la plante avant même que le stress ne devienne visible.
